Preview

Кардиоваскулярная терапия и профилактика

Расширенный поиск

Циркулирующие микроРНК и развитие коллатерального кровообращения при хронической окклюзии коронарной артерии

https://doi.org/10.15829/1728-8800-2024-4190

EDN: OPXTFM

Содержание

Перейти к:

Аннотация

Коронарное коллатеральное кровообращение (ККК), формирующееся выше зоны хронической окклюзии коронарной артерии, является альтернативным кровоснабжением ишемизированного миокарда и повышает выживаемость среди пациентов с ишемической бо­лезнью сердца. В связи с этим идентификация новых маркеров, связанных с выраженностью ККК, имеет диагностический потенциал для стратификации пациентов. Показано, что циркулирующие микроРНК (микро рибонуклеиновые кислоты) играют важную роль практически во всех аспектах деятельности сердечно-сосудистой системы, в т.ч. продемонстрирована связь ряда микроРНК с выраженностью ККК. Цель обзора — рассмотрение основных современных исследований, посвященных изучению ассоциации циркулирующих микроРНК и выраженности ККК при наличии хронической окклюзии коронарной артерии у пациентов с ишемической болезнью сердца, с последующим функциональным анализом выявленных микроРНК.

Для цитирования:


Киселева А.В., Сотникова Е.А., Куценко В.А., Жарикова А.А., Ершова А.И., Мешков А.Н., Драпкина О.М. Циркулирующие микроРНК и развитие коллатерального кровообращения при хронической окклюзии коронарной артерии. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2024;23(10):4190. https://doi.org/10.15829/1728-8800-2024-4190. EDN: OPXTFM

For citation:


Kiseleva A.V., Sotnikova E.A., Kutsenko V.A., Zharikova A.A., Ershova A.I., Meshkov A.N., Drapkina O.M. Circulating microRNAs and collateral circulation in coronary chronic total occlusion. Cardiovascular Therapy and Prevention. 2024;23(10):4190. (In Russ.) https://doi.org/10.15829/1728-8800-2024-4190. EDN: OPXTFM

Введение

Ишемическая болезнь сердца (ИБС) является основной причиной смерти и инвалидности во всем мире [1][2]. Хроническая окклюзия коронарной артерии (ХОКА) представляет собой серьезную клиническую проблему в спектре ИБС [3]. В связи с этим необходимы терапевтические стратегии, способствующие развитию хорошего коронарного коллатерального кровообращения (ККК), функционирующего как естественный обходной путь, поддерживающий снабжение кровью миокарда [4].

ККК формируется выше зоны ХОКА и играет жизненно важную роль в поддержании функционирования сердца, повышая выживаемость пациентов при ИБС и других неблагоприятных сердечных событиях [3][5-7]. ХОКА определяется как отсутствие антеградного кровотока, 0 по классификации TIMI (Thrombolysis In Myocardial Infarction), с предполагаемой продолжительностью не <3 мес. [8]. ХОКА диагностируется у 16-52% пациентов с ИБС [9-12]. В отличие от пациентов с неокклюзионной ИБС, пациенты с ХОКА обычно имеют предшествующий инфаркт миокарда, заболевания периферических артерий и сопутствующие заболевания, такие как сахарный диабет и артериальная гипертония [9]. ХОКА можно рассматривать как финальную стадию обструктивной ИБС, и она ассоциирована с негативным долгосрочным прогнозом [13].

Большое клиническое значение имеет изучение механизмов формирования ККК, а также выявление биомаркеров выраженности ККК [14]. Одним из наиболее важных процессов в развитии ККК является ангиогенез [4], который зависит от многочисленных факторов, включая гипоксию, сахарный диабет, артериальную гипертонию, воспаление, эффекты которых опосредованы в частности выработкой факторов роста, но они не могут полностью объяснить механизм образования ККК [15].

В большинстве исследований для выявления пациентов с недостаточной коллатерализацией применяют инвазивные методы на основе ангиографических данных (классификации по Rentrop [16] и по Werner [17]), а также на основе индекса коллатерального кровотока, рассчитанный с помощью измерения давления (pressure-derived collateral flow index, CFIp) [18-20].

Классификация по Rentrop основана на степени заполнения окклюзированного сосуда, классификация по Werner учитывает размер коллатералей на основе размера диаметра коллатерального соединения (КС) [21]. CFIp — метод, используемый для количественной оценки эффективности ККК в сердце [5] на основании измерения давления в аорте, в коронарной артерии дистальнее окклюзии и центрального венозного давления [3]. Однако с его помощью невозможно оценить ККК в контрольных группах здоровых людей [5].

В связи с тем, что развитие ККК оценивают, главным образом, с помощью инвазивных процедур, таких как коронарография, возможность выявлять циркулирующие биомаркеры, позволяющие различать пациентов с достаточно или недостаточно развитым ККК, имела бы большое клиническое значение [22][23]. Недавние исследования показали, что микроРНК играют важную роль практически во всех аспектах сердечно-сосудистой деятельности [24] и могут стать потенциальными неинвазивными биомаркерами сердечно-сосудистых заболеваний, включая ИБС [5][25][26].

МикроРНК — это короткие некодирующие одноцепочечные РНК (18-25 нуклеотидов), которые, взаимодействуя с матричной РНК (мРНК), участвуют в клеточной регуляции путем изменения уровня экспрессии генов, при этом одна микроРНК способна регулировать сотни мРНК [27]. МикроРНК, в зависимости от степени комплементарности микроРНК и мРНК, могут подавлять генную экспрессию с помощью деградации мРНК или ингибирования трансляции [28]. До одной трети всех мРНК подвергаются регуляции, опосредованной микроРНК [29][30].

Несмотря на то, что недавние исследования продемонстрировали важную роль микроРНК в регуляции ангиогенеза, артериогенеза и ремоделирования сосудов [5][14][23][28][31], данных об ассоциации микроРНК с выраженностью ККК немного.

Цель обзора — рассмотрение результатов основных современных исследований, посвященных изучению ассоциации циркулирующих микроРНК и выраженности ККК при наличии ХОКА у пациентов с ИБС, с последующим функциональным анализом выявленных микроРНК.

Методологические подходы

Поиск литературных источников был проведен по заголовкам, аннотациям и ключевым словам в системах индексирования научных публикаций (Google Scholar, PubMed, eLIBRARY) с использованием следующих запросов: "микроРНК + окклюз", "микроРНК + коллатерал", "microRNA + occlusion", "microRNA + collateral". Глубина поиска составила 10 лет. В обзор были включены только оригинальные исследования. В обзоре представлены обобщенные и систематизированные данные 13 литературных источников, посвященных поиску ассоциаций циркулирующих микроРНК с ККК у пациентов с ИБС и ХОКА.

Кроме того, критериями выбора публикаций были: наличие ИБС и разделение пациентов на группы с достаточно или недостаточно развитым ККК с применением известных классификаций (по Rentrop или Werner) или на основе CFIp. В результате литературного поиска были отобраны 13 источников, посвященных поиску ассоциаций циркулирующих микроРНК с ККК у пациентов с ИБС и ХОКА. В обзоре представлены обобщенные и систематизированные данные этих исследований.

Для микроРНК, показавших ассоциации с ККК в анализируемых исследованиях, был проведен функциональный анализ с помощью базы данных MSigDB1 [32]. Для полученных мРНК был выполнен анализ обогащения на основании баз данных по генной аннотации Gene ontology (GO)2 [33] категории биологические процессы (BP, biological process) и базы данных метаболических путей KEGG (Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes)3 [34].

Результаты

На основании проведенного анализа литературы было найдено 13 исследований, посвященных поиску ассоциаций циркулирующих микроРНК с ККК у пациентов с ХОКА (таблица 1). Все они выполнены на небольших выборках (от 26 до 249 человек). Только одно из исследований было проведено на двух независимых когортах [31]: обучающая когорта для анализа с помощью секвенирования следующего поколения (next generation sequencing, NGS) включала пациентов с ИБС с недостаточно (n=5) и достаточно развитым (n=5) ККК, а валидационная когорта для анализа с помощью количественной полимеразной цепной реакции (кПЦР) в режиме реального времени с обратной транскрипцией состояла из пациентов с ИБС с недостаточно (n=20) и достаточно развитым ККК (n=18) и здоровых лиц (контрольная группа, n=18). К сожалению, информация по сравнению уровней экспрессии между группами с достаточно и недостаточно развитым ККК и контрольной группой представлена только для одной из изучавшихся микроРНК — miR-15b-5p [31].

Таблица 1

Исследования, выявившие ассоциации циркулирующих микроРНК с ККК у пациентов с ХОКА

Исследование

Описание и размер выборки

Определение ККК

Биоматериал

микроРНК, изучаемые с помощью кПЦР

микроРНК, для которых выявлены ассоциации

Nie X, et al. (2014) [35]

Пациенты с ИБС (n=120), из них 64 — с Д-ККК и 56 — с НД-ККК. Контрольная группа — здоровые участники (n=30).

Классификация по Rentrop: НД-ККК (0 и 1) и Д-ККК (2 и 3).

плазма

miR-126

miR-126

Gacoń J, et al. (2015) [36]

Пациенты с ОКС (n=43), из них 16 — с открытой и 27 — с окклюзированной коронарной артерией.

Две группы пациентов: с TIMI 0 или 1 (окклюзированная коронарная артерия), с TIMI 2 или 3 (открытая коронарная артерия).

сыворотка

miR-1, miR-16, miR-34a, miR-122, miR-124, miR-208b, miR-133a/b, miR-375, miR-499

miR-133a, miR-133b, miR-34a, miR-124, miR-134

Hakimzadeh N, et al. (2015) [5]

Пациенты с ХОКА (n=41): из них 27 — с низким и 14 — с высоким CFIp. Контрольная группа — здоровые участники (n=19).

Высокий (>0,39) и низкий CFIp (<0,39).

цитратная плазма

miR423-5p, miR10b, miR30d, miR126

miR423-5p, miR10b, miR30d, miR-126

Wang J, et al. (2016) [23]

Пациенты с ИБС (n=78), из них 44 — с НД-ККК и 34 — с Д-ККК. Контрольная группа — здоровые участники без ИБС (n=34).

Классификация по Rentrop: НД-ККК (0 и 1) и Д-ККК (2 и 3).

плазма

miR-146a

miR-146a

Hakimzadeh N, et al. (2017) [6]

Пациенты с ХОКА (n=26), из них 14 — с высоким и 12 — с низким CFIp.

Высокий (>0,39) и низкий CFIp (<0,39).

моноциты

miR151a-3p, miR3607-3p, miR30b-5p, miR339-5p, miR122-5p, miR1307-5p, miR126-5p, miR155-5p

miR126-5p, miR155-5p, miR339-5p, miR30b-5p

Hou S, et al. (2017) [37]

Пациенты с ИБС (n=47, из них 25 — с НД-ККК и 22 — с Д-ККК.

Классификация по Rentrop: НД-ККК (0 и 1) и Д-ККК (2 и 3).

сыворотка

miR-939

miR-939

Wang J, et al. (2017) [38]

Пациенты с ИБС (n=78), из них 44 — с НД-ККК и 34 — с Д-ККК. Контрольная группа — здоровые участники без ИБС (n=34).

Классификация по Rentrop: НД-ККК (0 и 1) и Д-ККК (2 и 3).

плазма

miR-155

miR-155

Zhu L-P, et al. (2017) [31]

Две независимые когорты (n=66): обучающая когорта (n=10) из пациентов с ИБС по 5 с Д-ККК и НД-ККК, валидационная когорта (n=56) из пациентов с ИБС, из них 20 — с НД-ККК и 18 — с Д-ККК, и контрольная группа — здоровые участники (n=18, только для miR-15b-5p).

Классификация по Rentrop: НД-ККК (0 и 1) и Д-ККК (2 и 3).

плазма

hsa-miR-15b-5p, hsa-miR-126-3p, hsa-miR-92a-3p

hsa-miR-15b-5p, hsa-miR-126-3p

Fei Y, et al. (2018) [14]

Пациенты с ИБС (n=249), из них 76 — c Д-ККК и 92 — с НД-ККК. Контрольная группа — здоровые участники (n=81).

Классификация по Rentrop: НД-ККК (0 и 1) и Д-ККК (2 и 3).

плазма

miR-503

miR-503

Gao W, et al. (2022) [7]

Две когорты: NGS (n=9), из них 5 — с ИБС и 4 — с ХОКА; кПЦР (n=68): 46 — с ХОКА, из них 17 — с недостаточно и 27 — с достаточно развитым КС, контрольная группа — пациенты с ИБС (стеноз 50–90%) (n=22).

Классификация по Werner: недостаточно (0 или 1) и достаточно развитое КС (2).

плазма

hsa-miRNA-494-3p, hsa-miRNA-495-3p, hsa-miRNA-329-3p

hsa-miRNA-494-3p, hsa-miRNA-495-3p, hsa-miRNA-329-3p

Gao W, et al. (2024) [39]

Пациенты (n=146): 50 — с ИБС со стенозом 50–90%, 46 — с ХОКА, из них 17 — с недостаточно и 27 — с достаточно развитым КС, контрольная группа — без значимого коронарного стеноза, подтвержденного ангиографией (n=50).

Классификация по Werner: недостаточно (0 или 1) и достаточно развитое КС (2).

плазма

hsa-miR-495-3p

hsa-miR-495-3p

Исследование

Описание и размер выборки

Определение ККК

Биоматериал

микроРНК, изучаемые с помощью кПЦР

микроРНК, для которых выявлены ассоциации

Vural MG, et al. (2024) [3]

Пациенты с ХОКА (n=36), из них 19 — с НД-ККК и 17 — с Д-ККК (n=17).

Классификация по Rentrop: НД-ККК (0 и 1) и Д-ККК (2 и 3).

кровь

miR-10a, miR-19a, miR-21, miR-23b, miR-26a, miR-92a, miR-126, miR-130a, miR-663, let7d

miR-10a, miR-19a, miR-21, miR-23b, miR-26a, miR-92a, miR-126, miR-130a, miR-663, let7d

Киселева А. В. и др. (2024) [40]

Пациенты с ХОКА (n=23), из них 13 — с Д-ККК и 10 — с НД-ККК, контрольная группа — пациенты без значимого стеноза (<50%) (n=20).

Классификация по Rentrop: НД-ККК (0) и Д-ККК (3).

плазма

hsa-miR-126-5p, hsa-miR-146a-5p, hsa-miR-155-5p, hsa-miR-15b-5p, hsa-miR-21-5p, hsa-miR-210-5p, hsa-miR-23a-3p, hsa-miR-451a, hsa-miR-503-5p

hsa-miR-126-5p, hsa-miR-146a-5p, hsa-miR-155-5p, hsa-miR-15b-5p, hsa-miR-21-5p, hsa-miR-23a-3p, hsa-miR-451a

Примечание: ИБС — ишемическая болезнь сердца, Д-ККК — достаточно развитое коронарное коллатеральное кровообращение, ККК — коронарное коллатеральное кровообращение, кПЦР — количественная полимеразная цепная реакция, КС — коллатеральное соединение, микроРНК — короткие некодирующие одноцепочечные РНК, НД-ККК — недостаточно развитое ККК, ОКС — острый коронарный синдром, РНК — рибонуклеиновая кислота, ХОКА — хроническая окклюзия коронарной артерии, CFIp — индекс интракоронарного коллатерального кровотока, полученный под давлением, NGS — секвенирование следующего поколения, TIMI — тромболизис при инфаркте миокарда.

Разделение пациентов с достаточно или недостаточно развитым ККК в 8 работах [3][14][23][31][35][37][38][40] было выполнено по классификации Rentrop, которая ограничивается оценкой коллатеральных сосудов диаметром >100 мкм [3][18]. В большинстве исследований пациенты с ИБС и ХОКА разделяются на группы по классификации по Rentrop следующим образом: недостаточно развитое ККК (0 и 1) и достаточно развитое ККК (2 и 3).

В двух исследованиях применялась классификация по Werner [7][39]: к группе с недостаточно развитым КС относятся оценки 0 или 1, а к группе достаточно развитым КС — оценка 2 [7][39]. В двух других работах использовался метод CFIp [5][6], где пациенты с ИБС и ХОКА разделяются на группы с высоким (>0,39) и низким (<0,39) CFIp.

В работе Gacoń J, et al. (2015) не проводилось разделение пациентов на группы с достаточно и недостаточно развитым ККК, пациенты с неосложненным острым коронарным синдромом были классифицированы в зависимости от состояния инфаркт-связанной коронарной артерии: открытого и окклюзированного [36]. Это исследование было включено в обзор, т.к. сравнение экспрессии изучаемых микроРНК проводилось в группах ХОКА и ИБС без ХОКА.

В качестве метода количественного определения микроРНК во всех работах использовалась кПЦР в режиме реального времени с обратной транскрипцией. Кроме того, в трех исследованиях применялся метод NGS для идентифицирования микроРНК, которые могут участвовать в развитии коллатеральных сосудов [6][7][31]. Во всех работах оценивалась экспрессия небольшого числа микроРНК (от 1 до 10).

В исследованиях, включенных в настоящий обзор, микроРНК для валидации были отобраны на основании анализа тотальной микроРНК с помощью NGS [6][7][31][39] или большого числа микроРНК (n=750) [5] с помощью кПЦР или на основании литературных данных, указывающих на их связь с ангиогенезом [14][23][35][38], механочувствительностью [3], ИБС [40], ишемией [36], ХОКА с недостаточно и достаточно развитым ККК [40].

Суммарно во всех работах статистически значимые ассоциации были выявлены для 30 микроРНК (таблица 2). Только 8 микроРНК (miR-15b, miR-21, miR-92a, miR-126, miR-146a, miR-155, miR-495, miR-503) были включены более чем в одно исследование. Однако ни для одной из 8 микроРНК подтвердить полученные результаты не удалось. В большинстве случаев полученные различия могут быть объяснены небольшими размерами выборок, разными контрольными группами (пациенты с ИБС без ХОКА или здоровые участники), методиками категоризации ККК, выделения и определения уровней микроРНК, а также тем, что не указано, какая именно зрелая микроРНК была использована в исследовании (с какого из двух концов исходной пре-микроРНК была образована изучаемая микроРНК).

Таблица 2

МикроРНК, ассоциированные с ККК у пациентов с ХОКА

МикроРНК

Идентификатор в статье

Размер выборки (n)

Группы сравнения

Источник литературы

Д-ККК vs НД-ККК

Д-ККК vs ИБС

НД-ККК vs ИБС

ХОКА vs ИБС

Д-ККК vs ЗУ

НД-ККК vs ЗУ

ХОКА vs ЗУ

let-7d

let7d

36

sig

[3]

miR-10a

miR-10a

36

sig

[3]

miR-10b

miR10b

60

not sig

[5]

miR-15b

hsa-miR-15b-5p

56

[31]

 

hsa-miR-15b-5p

43

not sig

not sig

not sig

[40]

miR-19a

miR-19a

36

sig

[3]

miR-21

miR-21

36

sig

[3]

 

hsa-miR-21-5p

43

not sig

not sig

not sig

not sig

[40]

miR-23a

hsa-miR-23a-3p

43

not sig

not sig

[40]

miR-23b

miR-23b

36

sig

[3]

miR-26a

miR-26a

36

sig

[3]

miR-30b

miR30b-5p

26

[6]

miR-30d

miR30d

60

[5]

miR-34a

miR-34a

43

[36]

miR-92a

hsa-miR-92a-3p

56

not sig

[31]

 

miR-92a

36

sig

[3]

miR-124

miR-124

43

[36]

miR-126

miR-126

120

[35]

 

miR-126

60

[5]

 

hsa-miR-126-3p

56

[31]

 

miR126-5p

26

[6]

 

miR-126

36

sig

[3]

 

hsa-miR-126-5p

43

not sig

not sig

[40]

miR-130a

miR-130a

36

sig

[3]

miR-133a

miR-133a

43

[36]

miR-133b

miR-133b

43

[36]

miR-134

miR-134

43

[36]

miR-146a

hsa-miR-146a-5p

112

[23]

 

hsa-miR-146a-5p

43

not sig

not sig

not sig

not sig

[40]

miR-155

miR-155

112

not sig

[38]

 

miR155-5p

26

[6]

 

hsa-miR-155-5p

43

not sig

not sig

not sig

[40]

miR-329

hsa-miR-329-3p

68

[7]

miR-339

miR-339-5p

26

[6]

miR-423

miR423-5p

60

not sig

[5]

miR-451a

hsa-miR-451a

43

not sig

not sig

not sig

[40]

miR-494

hsa-miR-494-3p

68

[7]

miR-495

hsa-miR-495-3p

68

[7][39]

miR-503

miR-503

249

[14]

 

hsa-miR-503-5p

43

not sig

not sig

not sig

not sig

[40]

miR-663

miR-663

36

sig

[3]

miR-939

hsa-miR-939-5p

47

[37]

Примечание: ИБС — ишемическая болезнь сердца без ХОКА, ЗУ — здоровые участники, ККК — коронарное коллатеральное кровообращение, микроРНК — короткие некодирующие одноцепочечные РНК, НД-ККК — недостаточно развитое коллатеральное кровообращение, РНК — рибонуклеиновая кислота, ХОКА — хроническая окклюзия коронарной артерии, Д-ККК — достаточно развитое коллатеральное кровообращение, not sig — незначимые различия, sig — значимые различия, ↑ — повышенный уровень экспрессии, ↓ — cниженный уровень экспрессии, vs — против.

Целесообразно отдельно обсудить исследование [3], в котором в качестве изучаемого показателя использовался транскоронарный градиент — разница между экспрессией микроРНК в корне аорты и экспрессией микроРНК в правом предсердии/коронарном синусе. Ассоциация транскоронарных градиентов и развития ККК не может сравниваться с ассоциацией экспрессии микроРНК и развития ККК. Поэтому эта работа не будет рассматриваться далее, при обсуждении сравнения уровней экспрессии.

МикроРНК miR-126 была проанализирована в 5 работах [5][6][31][35][40]. Во всех 5 исследованиях общим было сравнение групп пациентов с достаточно и недостаточно развитым ККК: в двух экспрессия miR-126 была повышена [6][35], в двух — снижена [5][31], в одном значимых ассоциаций не обнаружено [40]. Кроме того, был выявлен значимо повышенный [5] и сниженный [35] уровень экспрессии в группе пациентов с ХОКА по сравнению со здоровыми участниками. Стоит отметить, что в трех исследованиях не была указана конкретная зрелая микроРНК (-3p или -5p) [3][5][35], в двух указана форма hsa-miR-126-5p [6][40], в одном — hsa-miR-126-3p [31].

МикроРНК miR-155 была проанализирована в трех исследованиях [6][38][40], в которых совпадало определение групп сравнения: пациенты с достаточно развитым ККК против таковых с недостаточно развитым ККК. Выявленное направление изменения уровня экспрессии было разным во всех трёх работах: снижение экспрессии [38], повышение [6], отсутствие значимых изменений экспрессии [40]. В исследовании [38] нет указания точной формы микроРНК, тогда как в двух других указано, что анализировалась hsa-miR-155-5p [6][40].

Для микроРНК miR-92a получены значимые различия в уровне экспрессии между группами пациентов с достаточно и недостаточно развитым ККК только в одном [3] из двух исследований [3][31].

Для 4 микроРНК (miR-15b-5p [31][40], miR-21 [3][40], miR-146a-5p [23][40], miR-503 [14, 40]) данные об уровне экспрессии для групп пациентов с достаточно и недостаточно развитым ККК получены как минимум в двух исследованиях, одно из которых [40]. Для каждой микроРНК в исследовании [40] подтверждения ранее обнаруженных ассоциаций не получено.

Для микроРНК hsa-miR-495-3p значимые различия в уровне экспрессии были получены в двух исследованиях [7][39], уровень экспрессии был снижен в группе хорошего КС по сравнению с плохим, а также в группе ХОКА по сравнению с ИБС без ХОКА. Однако в этих исследованиях в точности совпадает размер выборки и подгрупп пациентов. Это вызывает сомнения в независимости исследованных выборок.

Функциональный анализ с помощью базы данных MSigDB [32] был выполнен для всех 30 микроРНК, показавших ассоциации с ККК в анализируемых исследованиях. Из 30 микроРНК, включенных в анализ, для 26 микроРНК (let-7d, miR-10a, miR-10b, miR-15b, miR-19a, miR-21, miR-23a, miR-23b, miR-26a, miR-30b, miR-30d, miR-34a, miR-124, miR-126, miR-130a, miR-133a, miR-133b, miR-134, miR-146a, miR-155, miR-329, miR-339, miR-423, miR-494, miR-495, miR-503) было выявлено 3886 мРНК, которые потенциально являются мишенью для хотя бы одной из исследуемых микроРНК. Для полученных 3886 мРНК был выполнен анализ обогащения на основании баз данных GO [33] и KEGG [34]. В результате с помощью GO (BP) было выявлено обогащение 1787 GO BP категорий, среди которых есть те, которые относятся к биологическим процессам, которые могут быть вовлечены в развитие ККК, такие как: регуляция клеточного роста (GO:0001558, regulation of cell growth), развитие артерий (GO:0060840, artery development), позитивная регуляция ангиогенеза (GO:0045766, positive regulation of angiogenesis). Аналогично по результатам анализа метаболических путей KEGG было выявлено обогащение 145 путей, среди которых можно выделить те, которые ассоциированы с сердечно-сосудистыми процессами, например, атеросклероз (hsa05417, lipid and atherosclerosis), сигнальный путь факторов роста эндотелия сосудов (hsa04370, VEGF signaling pathway). Таким образом, эти микроРНК могут быть вовлечены в регуляцию экспрессии генов, продукты которых, вероятно, участвуют в развитии сердечно-сосудистых патологий.

Поскольку количество таргетов микроРНК оказалось слишком большим, чтобы ожидать конкретного функционального результата, был реализован анализ обогащения для набора таргетов микроРНК, которые поддержаны как минимум двумя микроРНК (n=2126). В результате было выявлено обогащение 1230 GO BP категорий и 102 метаболических пути по данным базы KEGG. При сокращении общего количества таргетов ≥2 раза количество обогащенных категорий сократилось незначительно. Как и исходный анализ, анализ усеченного списка таргетных мРНК показал обогащение довольно общих и крупных категорий, что может свидетельствовать о дисперсии функций таргетов для исследуемого набора мРНК. Это, в свою очередь, позволяет предположить, что все исследуемые в обзоре микроРНК принимают участие в регуляции большого количества разнообразных и важных процессов для жизнедеятельности клетки и организма в целом. Ограничением проведенного биоинформатического анализа является отсутствие экспериментального подтверждения для получения более точных утверждений.

Основным недостатком исследований по ассоциации уровней экспрессии микроРНК с ККК является то, что они проведены на небольших выборках (до 249 участников) и только одна на двух независимых когортах [31]. Кроме того, отсутствует стандартизация в выборе контрольной группы, например, в части работ это здоровые люди [5][14][23][31][35][38], тогда как в других — это пациенты с ИБС без значимого стеноза или ИБС без ХОКА [39][40]. В 5 исследованиях присутствовали только пациенты с ИБС с достаточно и недостаточно развитым ККК [3][6][7][36][37]. В исследованиях применяются разные методы оценки ККК: классификация ККК по Rentrop [3][14][23][31][35][37][38], классификация по Werner [7][39] и CFIp [5][6].

При работе с образцами плазмы или сыворотки многие факторы на всех этапах процесса могут повлиять на результат анализа, поэтому для сравнения результатов важно свести к минимуму различия на преаналитическом (сбор, обработка и хранение плазмы), аналитическом (экстракция, синтез комплементарной дезоксирибонуклеиновой кислоты (ДНК) и кПЦР) этапах и этапе статистической обработки данных (нормализация) [27][41][42].

В рассмотренных в настоящем обзоре исследованиях для получения циркулирующих микроРНК использовались разные типы образцов. Чаще всего биоматериалом служила плазма крови [7][14][23][31][35][38-40], реже — сыворотка [36][37], цитратная плазма [5], моноциты [6] и образцы крови из корня аорты и правого предсердия или коронарного синуса, позволяющие измерить транскоронарные градиенты [3]. Ранее было продемонстрировано, что уровень экспрессии микроРНК в разных типах образцов не сопоставим даже у одного и того же человека [43][44]; это затрудняет сравнение результатов исследований, проводимых с использованием разных биоматериалов [27].

На уровень экспрессии микроРНК могут влиять и другие факторы [45]. Например, приахарном диабете нарушается формирование сети коллатеральных коронарных артерий [46] и снижается экспрессия нескольких микроРНК, включая miR-126 [47]. Было показано, что на экспрессию микроРНК влияет лекарственная терапия такими препаратами, как аспирин и статины [6][48]. В одном из исследований группы пациентов с достаточно и недостаточно развитым ККК различались по доле лиц, принимающих статины [6].

К различным результатам детекции может приводить использование разных протоколов выделения микроРНК [27][41][42]. В одном из исследований были использованы разные наборы для выделения в группе пациентов с ХОКА и в контрольной группе [5]. Поскольку микроРНК становятся потенциальными циркулирующими биомаркерами для диагностики или прогнозирования широкого спектра заболеваний, количественная оценка микроРНК требует тщательного преаналитического анализа, а контроль качества образцов становится решающим [43].

При использовании методов количественного определения микроРНК требуется нормализация для учета и корректировки различий между образцами, в то же время различные методы нормализации могут привести к противоречивым результатам [27][49]. Для нормализации можно использовать повсеместно экспрессируемую эндогенную микроРНК, например, малую ядерную РНК (мяРНК, snRNA) U6 [50][51], а также экзогенные микроРНК "spike-in" (такие как, Caenorhabditis elegans — cel-miR-39, cel-miR-54, cel-miR-238). В большинстве исследований по ККК используются разные РНК: мяРНК U6 [7][23][31][37][39], малая ядрышковая РНК (мякРНК, snoRNA) SNORD61 [3], miR-39 Caenorhabditis elegans (cel-miR-39) [14], miR-238 Caenorhabditis elegans (cel-miR-238-3p) [31], miR-16 [36][40], miR-223 [5]. В работе Hakimzadeh N, et al. (2017) нормализацию проводили с использованием стабильно экспрессируемых эндогенных контролей для каждого фенотипа моноцитов/макрофагов, и в связи с этим отсутствовал один общий эндогенный контроль, подходящий для всех фенотипов клеток [6].

При статистическом анализе в области количественной генетики необходимо введение поправки на множественные сравнения [52]. Отсутствие поправки приводит к завышению уровня значимости и выявлению большого числа ложных ассоциаций. Из 13 рассматриваемых работ поправка на множественные сравнения была упомянута всего в трех [7][31][40]. Таким образом, обсуждаемые ранее различия в найденных ассоциациях, описанных в различных работах, могут объясняться тем, что большинство этих ассоциаций — ложные обнаружения по причине неудовлетворительного статистического анализа.

Хотя исследования продемонстрировали наличие ассоциации уровня экспрессии микроРНК с ККК у пациентов с ХОКА, стандартизированных данных для принятия решения об использовании микроРНК в клинической практике все еще недостаточно. Основные причины: использование небольших выборок, отсутствие стандартизации в выборе контрольной группы, источника циркулирующих микроРНК, протокола выделения и метода нормализации при оценке уровня экспрессии микроРНК, а также отсутствие поправки на множественные сравнения.

Заключение

Возможность определения степени выраженности ККК у пациентов без проведения инвазивной катетеризации имеет потенциальное клиническое значение. Однако, несмотря на ряд исследований, посвященных поиску ассоциаций экспрессии микроРНК с развитием ККК у пациентов с ХОКА, необходимо дополнительное изучение прогностической силы микроРНК, ассоциированных с развитием ККК. Большинство изученных микроРНК были включены лишь в одно исследование, поэтому требуются более крупные многоцентровые исследования, проведенные на различных когортах пациентов с применением стандартизированных процедур обработки образцов, выделения и анализа микроРНК. Эти данные позволят принять решение о возможности применения микроРНК в качестве биомаркеров ИБС и развития ККК.

Отношения и деятельность: все авторы заявляют об отсутствии потенциального конфликта интересов, требующего раскрытия в данной статье.

1. База данных MSigDB. https://www.gsea-msigdb.org/gsea/msigdb (2 October 2024).

2. База данных по генной аннотации Gene ontology. https://geneontology.org/ (2 October 2024).

3. База данных метаболических путей Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes https://www.genome.jp/kegg/pathway.html (2 October 2024).

Список литературы

1. Antonio M, Misganaw TA, Ali M. Global Burden of cardiovascular diseases and risk factors, 1990–2019: update from the GBD 2019 study. J Am Coll Cardiol. 2020;76:2982-3021. doi:10.1016/j.jacc.2020.11.010.

2. Бойцов С. А., Погосова Н. В., Аншелес А. А. и др. Кардиоваскулярная профилактика 2022. Российские национальные рекомендации. Российский кардиологический журнал. 2023;28(5):5452. doi:10.15829/1560-4071-2023-5452.

3. Vural MG, Temel HY, Turunc E, et al. Transcoronary Gradients of Mechanosensitive MicroRNAs as Predictors of Collateral Development in Chronic Total Occlusion. Medicina. 2024;60. doi:10.3390/medicina60040590.

4. Zimarino M, D’Andreamatteo M, Waksman R, et al. The dy­namics of the coronary collateral circulation. Nat Rev Cardiol. 2014;11: 191-7. doi:10.1038/nrcardio.2013.207.

5. Hakimzadeh N, Nossent AY, van der Laan AM, et al. Circulating MicroRNAs Characterizing Patients with Insufficient Coronary Collateral Artery Function. PLoS One. 2015;10:e0137035. doi:10.1371/journal.pone.0137035.

6. Hakimzadeh N, Elias J, Wijntjens GWM, et al. Monocytic micro­RNA profile associated with coronary collateral artery function in chronic total occlusion patients. Sci Rep. 2017;7:1532. doi:10.1038/s41598-017-01695-3.

7. Gao W, Zhang J, Wu R, et al. Integrated Analysis of Angiogenesis Related lncRNA-miRNA-mRNA in Patients With Coronary Chronic Total Occlusion Disease. Front Genet. 2022;13. doi:10.3389/fgene.2022.855549.

8. Brilakis ES, Mashayekhi K, Tsuchikane E, et al. Guiding Principles for Chronic Total Occlusion Percutaneous Coronary Interven­tion. Circulation. 2019;140:420-33. doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.119.039797.

9. Råmunddal T, Hoebers LP, Henriques JPS, et al. Chronic total occlusions in Sweden-a report from the Swedish Coronary Angiography and Angioplasty Registry (SCAAR). PLoS One. 2014;9:e103850. doi:10.1371/journal.pone.0103850.

10. Fefer P, Knudtson ML, Cheema AN, et al. Current perspectives on coronary chronic total occlusions: the Canadian Multicenter Chronic Total Occlusions Registry. J Am Coll Cardiol. 2012;59: 991-7. doi:10.1016/j.jacc.2011.12.007.

11. Christofferson RD, Lehmann KG, Martin GV, et al. Effect of chronic total coronary occlusion on treatment strategy. Am J Cardiol. 2005;95:1088-91. doi:10.1016/j.amjcard.2004.12.065.

12. Васильев Д. К., Руденко Б. А., Шаноян А. С. и др. Предикторы безуспешной эндоваскулярной реканализации хронических окклюзий коронарного русла. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2021;20(3):2725. doi:10.15829/1728-8800-2021-2725.

13. Liao R, Li Z, Wang Q, et al. Revascularization of chronic total occlusion coronary artery and cardiac regeneration. Front Cardiovasc Med. 2022;9:940808. doi:10.3389/fcvm.2022.940808.

14. Fei Y, Hou J, Xuan W, et al. The relationship of plasma miR-503 and coronary collateral circulation in patients with coronary artery disease. Life Sci. 2018;207:145-51. doi:10.1016/j.lfs.2018.06.001.

15. Seiler C, Stoller M, Pitt B, et al. The human coronary collateral circulation: development and clinical importance. Eur Heart J. 2013;34:2674-82. doi:10.1093/eurheartj/eht195.

16. Rentrop KP, Cohen M, Blanke H, et al. Changes in collateral channel filling immediately after controlled coronary artery occlusion by an angioplasty balloon in human subjects. J Am Coll Cardiol. 1985;5:587-92. doi:10.1016/s0735-1097(85)80380-6.

17. Werner GS, Ferrari M, Heinke S, et al. Angiographic asses­sment of collateral connections in comparison with invasively determined collateral function in chronic coronary occlusions. Circulation. 2003;107:1972-7. doi:10.1161/01.CIR.0000061953.72662.3A.

18. Hakimzadeh N, Piek JJ. MicroRNAs to take the place of collateral flow index measurements and Rentrop scoring?-Reply to Papageorgiou et al. Ann Transl Med. 2016;4:297. doi:10.21037/atm.2016.07.26.

19. Pijls NH, van Son JA, Kirkeeide RL, et al. Experimental basis of determining maximum coronary, myocardial, and collateral blood flow by pressure measurements for assessing functional stenosis severity before and after percutaneous transluminal coronary angioplasty. Circulation. 1993;87:1354-67. doi:10.1161/01.CIR.87.4.1354.

20. Seiler C, Fleisch M, Garachemani A, et al. Coronary collateral quantitation in patients with coronary artery disease using intravascular flow velocity or pressure measurements. J Am Coll Cardiol. 1998;32:1272-9. doi:10.1016/s0735-1097(98)00384-2.

21. Бадоян А. Г., Горгулько А. П., Хелимский Д. А. и др. Роль коллатерального кровообращения в поддержании и восстановлении функции миокарда левого желудочка и современные методы его оценки. Российский кардиологический журнал. 2022;27(8):5164. doi:10.15829/1560-4071-2022-5164.

22. Elsman P, van ’t Hof AWJ, de Boer MJ, et al. Role of collateral circulation in the acute phase of ST-segment-elevation myocardial infarction treated with primary coronary intervention. Eur Heart J. 2004;25:854-8. doi:10.1016/j.ehj.2004.03.005.

23. Wang J, Yan Y, Song D, et al. Reduced plasma miR-146a is a predictor of poor coronary collateral circulation in patients with coronary artery disease. Biomed Res Int. 2016;2016:4285942. doi:10.1155/2016/4285942.

24. Searles CD. MicroRNAs and Cardiovascular Disease Risk. Curr Cardiol Rep. 2024;26:51-60. doi:10.1007/s11886-023-02014-1.

25. Fazmin IT, Achercouk Z, Edling CE, et al. Circulating microRNA as a Biomarker for Coronary Artery Disease. Biomolecules. 2020;10:1354. doi:10.3390/biom10101354.

26. Zhelankin AV, Stonogina DA, Vasiliev SV, et al. Circulating Extra­cellular miRNA Analysis in Patients with Stable CAD and Acute Coronary Syndromes. Biomolecules. 2021;11:962. doi:10.3390/biom11070962.

27. Khan J, Lieberman JA, Lockwood CM. Variability in, variability out: best practice recommendations to standardize pre-analy­tical variables in the detection of circulating and tissue micro­RNAs. Clin Chem Lab Med. 2017;55:608-21. doi:10.1515/cclm-2016-0471.

28. Hans FP, Moser M, Bode C, et al. MicroRNA regulation of angio­genesis and arteriogenesis. Trends Cardiovasc Med. 2010;20: 253-62. doi:10.1016/j.tcm.2011.12.001.

29. Raitoharju E, Lyytikäinen L-P, Levula M, et al. miR-21, miR-210, miR-34a, and miR-146a/b are up-regulated in human atherosclerotic plaques in the Tampere Vascular Study. Atherosclerosis. 2011;219:211-7. doi:10.1016/j.atherosclerosis.2011.07.020.

30. Bergami M, Fabin N, Cenko E, et al. MicroRNAs as Potential Biomarkers in Coronary Artery Disease. Curr Top Med Chem. 2023;23:454-69. doi:10.2174/1568026623666221221124530.

31. Zhu L-P, Zhou J-P, Zhang J-X, et al. MiR-15b-5p Regulates Collateral Artery Formation by Targeting AKT3 (Protein Kinase B-3). Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2017;37:957-68. doi:10.1161/ATVBAHA.116.308905.

32. Subramanian A, Tamayo P, Mootha VK, et al. Gene set enrichment analysis: a knowledge-based approach for interpreting genome-wide expression profiles. Proc Natl Acad Sci U S A. 2005;102:15545-50. doi:10.1073/pnas.0506580102.

33. Gene Ontology Consortium, Aleksander SA, Balhoff J, et al. The Gene Ontology knowledgebase in 2023. Genetics. 2023;224: iyad031. doi:10.1093/genetics/iyad031.

34. Kanehisa M, Furumichi M, Sato Y, et al. KEGG for taxonomy-based analysis of pathways and genomes. Nucleic Acids Res. 2023;51:D587-92. doi:10.1093/nar/gkac963.

35. Nie X, Su L, Zhou Y, et al. Association between plasma levels of microRNA-126 and coronary collaterals in patients with coronary artery disease. Zhonghua Xin Xue Guan Bing Za Zhi. 2014;42:561-5. doi:10.3760/cma.j.issn.0253-3758.2014.07.008.

36. Gacoń J, Kabłak-Ziembicka A, Stępień E, et al. Decision-making microRNAs (miR-124, -133a/b, -34a and -134) in patients with occluded target vessel in acute coronary syndrome. Kardiol Pol. 2015;74:280-8. doi:10.5603/KP.a2015.0174.

37. Hou S, Fang M, Zhu Q, et al. MicroRNA-939 governs vascular integrity and angiogenesis through targeting γ-catenin in endothelial cells. Biochem Biophys Res Commun. 2017;484:27-33. doi:10.1016/j.bbrc.2017.01.085.

38. Wang J, Yan Y, Song D, et al. The association of plasma miR-155 and VCAM-1 levels with coronary collateral circulation. Biomark Med. 2017;11:125-31. doi:10.2217/bmm-2016-0282.

39. Gao W, Li C, Yuan J, et al. Circ-MBOAT2 regulates angiogenesis via the miR-495/NOTCH1 axis and associates with myocardial perfusion in patients with coronary chronic total occlusion. Int J Mol Sci. 2024;25:793. doi:10.3390/ijms25020793.

40. Киселева А. В., Васильев Д. К., Сопленкова А. Г. и др. Ассоциация уровней циркулирующих микроРНК плазмы с различной выраженностью коллатерального кровообращения при хронической окклюзии коронарной артерии у пациентов с ишемической болезнью сердца: пилотное исследование. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2024;23(7):4086. doi:10.15829/1728-8800-2024-4086.

41. Wong RKY, MacMahon M, Woodside JV, et al. A comparison of RNA extraction and sequencing protocols for detection of small RNAs in plasma. BMC Genomics. 2019;20:446. doi:10.1186/s12864-019-5826-7.

42. Brunet-Vega A, Pericay C, Quílez ME, et al. Variability in microRNA recovery from plasma: Comparison of five commercial kits. Anal Biochem. 2015;488:28-35. doi:10.1016/j.ab.2015.07.018.

43. Chan S-F, Cheng H, Goh KK-R, et al. Preanalytic Methodological Considerations and Sample Quality Control of Circulating miRNAs. J Mol Diagn. 2023;25:438-53. doi:10.1016/j.jmoldx.2023.03.005.

44. Zhelankin AV, Iulmetova LN, Sharova EI. The Impact of the Anticoagulant Type in Blood Collection Tubes on Circulating Extracellular Plasma MicroRNA Profiles Revealed by Small RNA Sequencing. Int J Mol Sci. 2022;23:10340. doi:10.3390/ijms231810340.

45. Papageorgiou N, Zacharia E, Tousoulis D. Association between microRNAs and coronary collateral circulation: is there a new role for the small non-coding RNAs? Ann Transl Med. 2016;4:223. doi:10.21037/atm.2016.05.51.

46. İleri M, Güray Ü, Yetkin E, et al. A new risk scoring model for prediction of poor coronary collateral circulation in acute non-ST-elevation myocardial infarction. Cardiol J. 2016;23:107-13. doi:10.5603/CJ.a2015.0064.

47. Jansen F, Yang X, Hoelscher M, et al. Endothelial Microparticle–Mediated Transfer of MicroRNA-126 Promotes Vascular Endothelial Cell Repair via SPRED1 and Is Abrogated in Glucose-Damaged Endothelial Microparticles. Circulation. 2013;128:2026-38. doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.113.001720.

48. de Boer HC, van Solingen C, Prins J, et al. Aspirin treatment hampers the use of plasma microRNA-126 as a biomarker for the progression of vascular disease. Eur Heart J. 2013;34:3451-7. doi:10.1093/eurheartj/eht007.

49. Xiang M, Zeng Y, Yang R, et al. U6 is not a suitable endogenous control for the quantification of circulating microRNAs. Biochem Biophys Res Commun. 2014;454:210-14. doi:10.1016/j.bbrc.2014.10.064.

50. Chen X, Ba Y, Ma L, et al. Characterization of microRNAs in serum: a novel class of biomarkers for diagnosis of cancer and other diseases. Cell Res. 2008;18:997-1006. doi:10.1038/cr.2008.282.

51. Tomasetti M, Staffolani S, Nocchi L, et al. Clinical significance of circulating miR-126 quantification in malignant mesothelioma patients. Clin Biochem. 2012;45:575-81. doi:10.1016/j.clinbiochem.2012.02.009.

52. Goeman JJ, Solari A. Multiple hypothesis testing in genomics. Stat Med. 2014;33:1946-78. doi:10.1002/sim.6082.


Об авторах

А. В. Киселева
ФГБУ "Национальный медицинский исследовательский центр терапии и профилактической медицины" Минздрава России
Россия

Киселева Анна Витальевна — к.б.н., руководитель лаборатории молекулярной генетики Института персонализированной терапии и профилактики, в.н.с.

Москва



Е. А. Сотникова
ФГБУ "Национальный медицинский исследовательский центр терапии и профилактической медицины" Минздрава России
Россия

Сотникова Евгения Андреевна — с.н.с. лаборатории молекулярной генетики.

Москва



В. А. Куценко
ФГБУ "Национальный медицинский исследовательский центр терапии и профилактической медицины" Минздрава России
Россия

Куценко Владимир Александрович — к.ф.-м.н., с.н.с. лаборатория биостатистики отдела эпидемиологии хронических неинфекционных заболеваний.

Москва



А. А. Жарикова
ФГБУ "Национальный медицинский исследовательский центр терапии и профилактической медицины" Минздрава России; ФГБОУ ВО "Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова"
Россия

Жарикова Анастасия Александровна — к.б.н., в.н.с. лаборатории молекулярной генетики, старший преподаватель факультета биоинженерии и биоинформатики.

Москва



А. И. Ершова
ФГБУ "Национальный медицинский исследовательский центр терапии и профилактической медицины" Минздрава России
Россия

Ершова Александра Игоревна — д.м.н., руководитель лаборатории клиномики, зам. директора по фундаментальной науке.

Москва



А. Н. Мешков
ФГБУ "Национальный медицинский исследовательский центр терапии и профилактической медицины" Минздрава России
Россия

Мешков Алексей Николаевич — д.м.н., руководитель Института персонализированной терапии и профилактики.

Москва



О. М. Драпкина
ФГБУ "Национальный медицинский исследовательский центр терапии и профилактической медицины" Минздрава России
Россия

Драпкина Оксана Михайловна — д.м.н., профессор, академик РАН, директор.

Москва



Дополнительные файлы

Что известно о предмете исследования?

  • Коронарное коллатеральное кровообращение является альтернативным кровоснабжением ишеми­зированного миокарда.
  • Возможность определения потенциала для развития коронарного коллатерального кровооб­ращения у пациентов без инвазивного вмешательства имеет большое клиническое значение.
  • Циркулирующие микроРНК играют важную роль практически во всех аспектах деятельности сер­дечно-сосудистой системы.

Что добавляют результаты исследования?

  • Большинство изученных микроРНК были проанализированы лишь в одной из включенных в обзор работ, поэтому требуются более крупные, в т.ч. многоцентровые, исследования.
  • Недостаточно валидированных данных для при­нятия решения об использовании микро­РНК в клинической практике у пациентов с хро­ни­ческой окклюзией коронарной артерии.
  • Функциональный анализ, проведенный для включенных в обзор микроРНК, показал их по­тенциальную роль в регуляции экспрессии генов, продукты которых, вероятно, участвуют в сердечно-­сосудистых патологиях.

Рецензия

Для цитирования:


Киселева А.В., Сотникова Е.А., Куценко В.А., Жарикова А.А., Ершова А.И., Мешков А.Н., Драпкина О.М. Циркулирующие микроРНК и развитие коллатерального кровообращения при хронической окклюзии коронарной артерии. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2024;23(10):4190. https://doi.org/10.15829/1728-8800-2024-4190. EDN: OPXTFM

For citation:


Kiseleva A.V., Sotnikova E.A., Kutsenko V.A., Zharikova A.A., Ershova A.I., Meshkov A.N., Drapkina O.M. Circulating microRNAs and collateral circulation in coronary chronic total occlusion. Cardiovascular Therapy and Prevention. 2024;23(10):4190. (In Russ.) https://doi.org/10.15829/1728-8800-2024-4190. EDN: OPXTFM

Просмотров: 202


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1728-8800 (Print)
ISSN 2619-0125 (Online)