Preview

Кардиоваскулярная терапия и профилактика

Расширенный поиск

Выраженность окислительного стресса и носительство полиморфных вариантов митохондриальной ДНК у пациентов с хронической сердечной недостаточностью, имеющих высокий риск внезапной сердечной смерти

https://doi.org/10.15829/1728-8800-2026-4782

EDN: OXPQIF

Содержание

Перейти к:

Аннотация

Цель. У пациентов с хронической сердечной недостаточностью (ХСН) и высоким риском внезапной сердечной смерти (ВСС) оценить выраженность окислительного стресса и носительство полиморфных вариантов митохондриальной дезоксирибонуклеиновой кислоты (мтДНК).

Материал и методы. В исследование включено 198 пациентов (78,79% — мужчины) с диагнозом ХСН и имплантированным кардиовертер-дефибриллятором в качестве профилактики развития жизнеугрожающих желудочковых тахикардий (ЖТ) и ВСС. Группу контроля составили 28 здоровых добровольца (64,29% — мужчины). Оценивали клинико-инструментальные показатели, концентрацию в плазме крови продуктов перекисного окисления липидов, реагирующих с тиобарбитуровой кислотой (ТБК-АП), и активность супероксиддисмутазы (СОД), полиморфные варианты А2706G/G3010A/G9055A мтДНК.

Результаты. Пациенты с ХСН и высоким риском ВСС имели статистически значимо более высокие показатели ТБК-АП и СОД относительно группы контроля. В группе здоровых добровольцев у мужчин относительно женщин показано более высокое содержание ТБК-АП и сниженная активность СОД. При ХСН половые различия нивелируются. Факт зарегистрированных ЖТ не влиял на концентрацию ТБК-АП и активность СОД. Наличие сахарного диабета 2 типа, ожирения и дислипидемии у пациентов с ХСН и риском ВСС сопровождалось значимым повышением ТБК-АП. У носителей полиморфизма G9055A показано значимо более низкая концентрация ТБК-АП относительно носителей А2706G.

Заключение. ХСН с высоким риском ВСС характеризуется выраженным окислительным стрессом. Перекисное окисление липидов в условиях нормы значимо выше у мужчин на фоне сниженной активности СОД. Нарушение обмена глюкозы и липидов при ХСН с риском ВСС сопровождается еще более интенсивным образованием ТБК-АП на фоне неизмененной активности СОД. Носительство полиморфного варианта G9055A мтДНК сопряжено с низким уровнем ТБК-АП.

Для цитирования:


Реброва Т.Ю., Корепанов В.А., Голубенко М.В., Муслимова Э.Ф., Атабеков Т.А., Попов С.В., Доржиева С.С., Утусикова А.А., Афанасьев С.А. Выраженность окислительного стресса и носительство полиморфных вариантов митохондриальной ДНК у пациентов с хронической сердечной недостаточностью, имеющих высокий риск внезапной сердечной смерти. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2026;25(7):4782. https://doi.org/10.15829/1728-8800-2026-4782. EDN: OXPQIF

For citation:


Rebrova T.Yu., Korepanov V.A., Golubenko M.V., Muslimova E.F., Atabekov T.A., Popov S.V., Dorzhieva S.S., Utusikova A.A., Afanasyev S.A. Oxidative stress severity and mitochondrial DNA polymorphisms in patients with heart failure at high risk of sudden cardiac death. Cardiovascular Therapy and Prevention. 2026;25(7):4782. (In Russ.) https://doi.org/10.15829/1728-8800-2026-4782. EDN: OXPQIF

Введение

Желудочковые тахиаритмии, включая фибрилляцию желудочков и желудочковую тахикардию (ЖТ), являются наиболее распространенными нарушениями сердечного ритма, приводящими к внезапной сердечной смерти (ВСС). В настоящее время накоплено достаточно фактов, подтверждающих, что одним из патогенетических звеньев развития хронической сердечной недостаточности (ХСН) и вызванных ею аритмий является окислительный стресс (ОС) [1-3]. Дисбаланс между скоростью образования свободных радикалов и активностью антиоксидантов при ОС приводит к повреждению клеточных структур кардиомиоцитов, запуску воспаления и фиброза, образуя субстрат для развития аритмий, особенно желудочковых, через механизмы активации никотинамидадениндинуклеотидфосфат-оксидаз [4] и повреждения митохондрий (МХ) [5]. В результате снижения выработки аденозинтрифосфата и чрезмерного образования активных форм кислорода (АФК) нарушается работа ионных каналов и транспортеров, что отражается на внутриклеточном ионном гомеостазе и возбудимости кардиомиоцитов [6] и может приводить к повышенной предрасположенности к нарушениям сердечного ритма.

Митохондриальный геном кодирует комплексы белков дыхательной цепи, следовательно, изменения кодирующей последовательности нуклеотидов могут отражаться на процессах энергетического обмена. В то же время расположение митохондриальной дезоксирибонуклеиновой кислоты (мтДНК) в непосредственной близости к дыхательной цепи, месту образования АФК, и низкая активность систем ее репарации в МХ обуславливает высокий уровень мутаций в мтДНК в сравнении с ядерной. Возникающие повреждения цепи мтДНК препятствуют воспроизведению и экспрессии митохондриального генома, а нуклеотидные замены могут вызывать изменения работы электрон-транспортной цепи (ЭТЦ) [7]. Таким образом, можно, предположить существование взаимосвязи между полиморфными вариантами мтДНК и интенсивностью ОС при сердечно-сосудистых заболеваниях (ССЗ).

Цель исследования — у пациентов с ХСН и высоким риском ВСС оценить выраженность ОС и носительство полиморфных вариантов мтДНК.

Материал и методы

В исследование включено 198 пациентов, из них 156 (78,79%) мужчин и 42 (21,21%) женщины с диагнозом ХСН I-III функционального класса (ФК) согласно классификации Нью-Йоркской ассоциации сердца (NYHA — New York Heart Association) и имплантированным кардиовертер-дефибриллятором (ИКД) в качестве первичной или вторичной профилактики развития жизнеугрожающих ЖТ и ВСС. Первичную профилактику осуществляли пациентам, которые имели высокую вероятность развития ВСС. Вторичная профилактика проводилась пациентам, имеющим в истории болезни эпизоды устойчивой ЖТ и/или фибрилляции желудочков, наличие симптоматики развития нарушений ритма сердца (синкопе, зарегистрированные на электрокардиограмме желудочковые тахиаритмии), перенесенную ВСС. После имплантации ИКД пациенты повторно обследовались по прошествии 6, 12 и 24 мес. для снятия показаний эндограмм системы ИКД-электрод.

Критерии включения пациентов в исследование: диагноз ХСН I-III ФК по NYHA, показания к имплантации ИКД, возраст >40 лет, добровольное информированное согласие. Критерии невключения: ХСН IV ФК по NYHA, отказ пациента от участия в исследовании на любом из этапов, каналопатии (синдром удлиненного интервала QT, синдром Бругада и пр.), сопутствующие тяжелые патологии, такие как онкологические заболевания, хроническая болезнь почек 4-5 стадий, наличие неврологических расстройств или психоэмоциональных состояний, показание к трансплантации сердца, беременность. Пациенты наблюдались в профильных отделениях НИИ кардиологии Томского НИМЦ. Протокол исследования одобрен комитетом по биомедицинской этике НИИ кардиологии Томского НИМЦ (протокол № 219 от 26.10.2021). Все пациенты подписали информированное согласие на участие в исследовании.

Клинико-инструментальная характеристика пациентов на момент включения в исследование представлена в таблице 1. Все данные взяты из базы данных "Клинико-лабораторные характеристики кардиологических пациентов с показаниями к имплантации кардиовертера-дефибриллятора" (https://elibrary.ru/item.asp?id=76385590).

Таблица 1

Клинико-инструментальная характеристика пациентов с ХСН, имеющих высокий риск ВСС

Показатель

Значение

Возраст, лет, Me (Q25; Q75)

64 (58; 71)

Мужчины, n (%)

156 (78,79)

Женщины, n (%)

42 (21,21)

Индекс массы тела, кг/м², Me (Q25; Q75)

27,7 (24,4; 32,1)

Заболевания сердечно-сосудистой системы

Стенокардия напряжения, n (%)

151 (76,26)

Ишемическая кардиомиопатия, n (%)

74 (37,37)

Постинфарктный кардиосклероз, n (%)

109 (55,05)

ФВ ЛЖ, %, Me (Q25; Q75)

35 (29; 49)

ФК I ХСН по NYHA, n (%)

23 (11,62)

ФК II ХСН по NYHA, n (%)

105 (53,03)

ФК III ХСН по NYHA, n (%)

70 (35,35)

Блокады проводящей системы сердца, n (%)

106 (53,54)

Гипертоническая болезнь, n (%)

179 (90,40)

Метаболические нарушения, n (%)

Ожирение

133 (67,17)

Дислипидемия

139 (70,20%)

Сахарный диабет 2 типа

35 (17,68)

Фармакологический анамнез, n (%)

ИАПФ/БРА

176 (88,89)

БАБ

172 (86,87)

Антикоагулянты

84 (42,42)

iSGLT2

88 (44,44)

Статины

167 (84,34)

Диуретики

131 (66,16)

Антиаритмики

79 (39,90)

БМКК

23 (11,61)

Антиагреганты

112 (56,57)

Биохимические показатели, Me (Q25; Q75)

Глюкоза, ммоль/л

5,6 (5,1; 6,3)

Общий холестерин, ммоль/л

4,10 (3,49; 4,85)

Триглицериды, ммоль/л

1,23 (0,90; 1,75)

Примечание: ЖКТ — желудочно-кишечный тракт, ИАПФ/БРА — ингибиторы ангиотензинпревращающего фермента/блокаторы рецепторов ангиотензина, БАБ — β-адреноблокаторы, БМКК — блокаторы медленных кальциевых каналов, ФВ ЛЖ — фракция выброса левого желудочка, ФК — функциональный класс, ХСН — хроническая сердечная недостаточность, iSGLT2 — ингибиторы натрий-глюкозного котранспортера 2 типа, NYHA — New York Heart Association (Нью-Йоркская ассоциация сердца), Me (Q25; Q75) — медиана (интерквартильный размах).

Одновременно с набором пациентов из 28 здоровых добровольцев была сформирована группа контроля (18 мужчин и 10 женщин), не имеющих в анамнезе сердечно-сосудистой патологии, нарушений обмена веществ (ожирения, сахарного диабета 1 или 2 типа, нарушений толерантности к глюкозе, дислипидемии, а также не получавших лекарственную терапию по данным фармакологического анамнеза. Медиана возраста в группе контроля составила 57 (50; 68) лет.

Всем пациентам и здоровым добровольцам утром натощак выполняли взятие венозной крови в два вакутейнера с антикоагулянтом — двукалиевой солью этилендиаминтетрауксусной кислоты (К2ЭДТА) объемом 10 мл. Для определения полиморфных вариантов и гаплогрупп мтДНК один вакутейнер направляли в лабораторию популяционной генетики НИИ медицинской генетики Томского НИМЦ. Полную последовательность митохондриального генома пациентов определяли методом массового параллельного секвенирования (секвенирование следующего поколения). Для этого мтДНК амплифицировали с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР) длинных фрагментов. Для каждого образца ДНК проводили две реакции ПЦР в раздельных пробирках, которые позволяют получить два ПЦР-продукта, полностью перекрывающих мтДНК: (1) длиной 9065 пар нуклеотидов (последовательности праймеров соответствуют позициям 9397-9416 и 1892-1873 референсной последовательности мтДНК человека) и (2) длиной 11170 пар нуклеотидов (позиции праймеров 15195-15214 и 9796-9777). Таким образом, полученные ПЦР-продукты перекрывались друг с другом в областях 9397-9796 и 15195-(0)-1873.

ПЦР длинных фрагментов проводили с помощью набора реактивов "БиоМастер LR HS-ПЦР (2x)" (БиоЛабМикс, Новосибирск). Концентрацию ПЦР-продуктов определяли на приборе Qubit (Thermo Fisher Scientific, США), используя реактивы для определения концентрации ДНК "Spectra Q BR" (Raissol, Россия). Затем два ПЦР-продукта для каждого индивида смешивали в эквимолярных количествах до концентрации ДНК 20 нг/мкл. ДНК-библиотеки готовили с помощью наборов реактивов для приготовления ДНК-библиотек, предназначенных для работы с геномной ДНК. Для этого использовали наборы DNA Prep (Illumina, США) и наборы "SG GM Plus" (Raissol, Россия), с использованием двойного индексирования. При приготовлении ДНК-библиотек следовали протоколу производителя. Секвенирование проводили на секвенаторе MiSeq (Illumina, США), набор реагентов MiSeq reagent v.2 kit 300 циклов, а также на секвенаторе GenoLab M (GeneMind, Китай), набор реагентов GenoLab M V2.0 FCM, 150 циклов. Нуклеотидные прочтения в формате fastq, полученные после демультиплексирования данных, выравнивали на референсную последовательность генома человека (hg38) с использованием программного обеспечения DRAGEN 3.9.5, DNA pipeline (Illumina, США). Полученные файлы формата bam анализировали с помощью специализированного для мтДНК программного обеспечения "MtDNA-Server 2" [8]. Наличие нуклеотидных замен выявляли при сопоставлении исследуемых образцов с референсной последовательностью мтДНК человека [9], а принадлежность выявленного гаплотипа к гаплогруппе мтДНК, оценивали согласно общепринятой классификации [10].

Для определения выраженности ОС оценивали активность фермента супероксиддисмутазы (СОД) и концентрацию активных продуктов перекисного окисления липидов (ПОЛ), реагирующих с тиобарбитуровой кислотой (ТБК-АП). Для этих исследований использовали образец крови из второго вакутейнера, который центрифугировали 10 мин при 3000 об./мин. Полученную плазму аликвотировали и хранили до выполнения анализов в низкотемпературной камере при -80 °С. В образцах плазмы в реакции с тиобарбитуровой кислотой проводили определение ТБК-АП ПОЛ по ранее опубликованному методу [11]. Активность СОД определяли гидроксиламиновым методом с использованием коммерческого набора реагентов Total Superoxide Dismutase (T-SOD) Assay Kit (Hydroxyiamine method), Cloud-Clone Corp. Измерение оптической плотности проб выполняли на спектрофотометре Biowave II (Biochrom Ltd., Великобритания). Активность фермента рассчитывали по формуле согласно инструкции к набору реактивов и выражали в Ед/мл.

У всех пациентов определены индекс массы тела и содержание в сыворотке крови глюкозы, общего холестерина и триглицеридов.

Статистическую обработку данных проводили с использованием программ Statistica 12.0. Проверку соответствия распределения количественных данных нормальному закону проводили критериями Колмогорова-Смирнова, Шапиро-Уилка. Сравнение независимых групп количественных переменных осуществляли U-критерием Манна-Уитни и критерием Краскела-Уоллиса. При попарном множественном сравнении количественных данных использовали поправку Бонферрони. Значения представлены в виде медианы и интерквартильного размаха — Me (Q25; Q75). Различия считали статистически значимыми при р<0,05.

Результаты

В сформированной выборке пациентов (таблица 1) преобладали мужчины, средний возраст составил 64 (58; 71) лет. У 11,62% пациентов выявлена ХСН ФК I, у 53,03% — ХСН ФК II и у 35,35% — ХСН ФК III. Постинфарктный кардиосклероз в анамнезе был у 55,05%, ишемическая кардиомиопатия у 37,37%. У 17,68% пациентов был диагностирован сахарный диабет 2 типа (СД2), 70,2% пациентов имели дислипидемию, 90,4% — артериальную гипертензию. В качестве терапии ишемической болезни сердца пациенты получали антиагреганты, антикоагулянты, β-блокаторы, статины. Большинство пациентов получали антигипертензивную терапию ингибиторами ангиотензинпревращающего фермента либо блокаторами рецепторов ангиотензина II, антагонистами кальция и диуретиками. Пациенты с коморбидным течением ХСН и СД2 получали ингибиторы натрий-глюкозного котранспортера 2 типа.

Благодаря проводимой фармакологической терапии показатели общего холестерина (ХС) и триглицеридов у включенных в исследование пациентов находились в пределах референсных значений. Уровень глюкозы крови незначительно превышал целевые значения.

Определение маркеров ОС позволило установить, что в общей выборке пациентов Me концентрации ТБК-АП составила 14,11 (11,03; 18,21) мкмоль/л и значимо (р=0,042) превышала показатель в группе контроля — 11,79 (10,90; 13,85) (таблица 2). Активность антиоксидантного фермента СОД составила 20,95 (16,27; 38,80) Ед/мл, что также значимо (р=0,001) превышало значения этого показателя в контрольной группе 15,67 (14,11; 18,40) Ед/мл.

Таблица 2

Показатели ТБК-АП и активности СОД в плазме крови пациентов с ХСН и высоким риском ВСС и здоровых добровольцев, Me (Q25; Q75)

Межгрупповые сравнения здоровые добровольцы vs ХСН+ВСС

Показатель

Здоровые (n=28)

  

ХСН+ВСС (n=198)

 

р

ТБК-АП, мкмоль/л

11,79 (10,90; 13,85)

  

14,11 (11,03; 18,21)

 

0,042

СОД, Ед/мл

15,67 (14,11; 18,40)

  

20,95 (16,27; 38,80)

 

0,001

Внутригрупповые сравнения мужчины vs женщины

Показатель

Здоровые (n=28)

ХСН+ВСС (n=198)

Мужчины (n=18)

Женщины (n=10)

р

Мужчины (n=156)

Женщины (n=42)

р

ТБК-АП, мкмоль/л

12,44 (11,92; 15,77)

10,90 (9,87; 11,60)

0,004

14,23 (11,35; 18,43)

14,08 (10,16; 16,76)

0,22

СОД, Ед/мл

15,26 (12,85; 15,74)

19,32 (16,73; 21,37)

0,003

20,39 (15,63; 34,60)

29,50 (21,15; 40,50)

0,066

Здоровые добровольцы vs ХСН+ВСС в группах мужчин и женщин

 

Мужчины здоровые (n=18)

Мужчины ХСН+ВСС (n=156)

р

Женщины здоровые (n=10)

Женщины ХСН+ВСС (n=42)

р

ТБК-АП, мкмоль/л

12,44 (11,92; 15,77)

14,23 (11,35; 18,43)

0,19

10,90 (9,87; 11,60)

14,08 (10,16; 16,76)

0,09

СОД, Ед/мл

15,26 (12,85; 15,74)

20,39 (15,63; 34,60)

0,001

19,32 (16,73; 21,37)

29,50 (21,15; 40,50)

0,039

Примечание: ВСС — внезапная сердечная смерть, ПОЛ — перекисное окисление липидов, СОД — супероксиддисмутаза, ТБК-АП — активные продукты ПОЛ, реагирующие с тиобарбитуровой кислотой, ХСН — хроническая сердечная недостаточность, Me (Q25; Q75) — медиана (интерквартильный размах).

Сравнение маркеров ОС у мужчин и женщин в рассматриваемых группах показало, что у здоровых женщин уровень ТБК-АП значимо ниже, чем у здоровых мужчин (р=0,004) (таблица 2). При этом активность СОД у здоровых женщин была значимо выше в сравнении с мужчинами (р=0,003). Напротив, в основной выборке мужчины и женщины не имели значимых различий по концентрации ТБК-АП в плазме, однако и здесь, у женщин отмечена тенденция к более высокой активности СОД в сравнении с мужчинами.

Была проведена оценка влияния рассматриваемой патологии на уровень ТБК-АП и активность СОД в женской и мужской когорте (таблица 2). Из представленных данных видно, что риск ВСС и у женщин, и у мужчин не связан с уровнем ТБК-АП. Однако и у женщин, и у мужчин с высоким риском ВСС было отмечено статистически значимое повышение активности СОД.

В рассматриваемой выборке пациентов по данным эндограмм ИКД за 24 мес. наблюдения возникновение эпизодов ЖТ было зарегистрировано у 55 человек. По этому признаку общая выборка была разделена на две подгруппы, в которых сравнили активность СОД и уровень ТБК-АП (таблица 3). В группе пациентов с зарегистрированными ЖТ концентрация ТБК-АП (p=0,68) и активность СОД (p=0,57) не отличались от показателей в группе без ЖТ.

Таблица 3

Активность СОД и концентрация ТБК-АП в зависимости от срабатывания ИКД по поводу жизнеугрожающей ЖТ и ФК ХСН, Me (Q25; Q75)

Показатель

Группа

ТБК-АП, мкмоль/л

СОД, Ед/мл

В зависимости от срабатывания ИКД

Срабатывание ИКД, n=55

14,23 (10,58; 18,52)

28,47 (18,90; 44,70)

Отсутствие срабатывания ИКД, n=142

13,59 (10,58; 17,28)

22,73 (17,27; 43,80)

р

0,68

0,57

В зависимости от ФК ХСН

ХСН ФК I, n=23

12,69 (10,23; 17,89)

35,80 (21,45; 48,00)

ХСН ФК II, n=104

14,14 (10,89; 16,61)

19,56 (15,63; 33,10)

ХСН ФК III, n=70

13,37 (10,35; 19,17)

22,73 (15,63; 38,80)

р

I ФК vs II ФК р=0,79

I ФК vs III ФК р=0,92

II ФК vs III ФК р=0,81

I ФК vs II ФК р=0,002

I ФК vs III ФК р=0,057

II ФК vs III ФК р=0,151

Примечание: ВСС — внезапная сердечная смерть, ИКД — имплантированный кардиовертер-дефибриллятор, ПОЛ — перекисное окисление липидов, СОД — супероксиддисмутаза, ТБК-АП — активные продукты ПОЛ, реагирующие с тиобарбитуровой кислотой, ФК — функциональный класс, ХСН — хроническая сердечная недостаточность, Me (Q25; Q75) — медиана (интерквартильный размах).

Сформированная выборка включала пациентов с ХСН I, II и III ФК по NYHA (таблица 1). Группы пациентов с разным ФК ХСН значимо не различались по уровню ТБК-АП в плазме крови (таблица 3). В подгруппе пациентов с ХСН I ФК активность СОД была статистически значимо выше, чем в подгруппе c ХСН ФК II (p=0,002). Показатель активности СОД в подгруппе ХСН III ФК значимо не отличался от аналогичного показателя в подгруппах ХСН I ФК и ХСН II ФК.

Активность СОД и концентрация ТБК-АП у пациентов была рассмотрена в зависимости от генеза ХСН. Сформированные подгруппы пациентов с ишемическим и не ишемическим генезом ХСН значимо не различались по концентрации ТБК-АП и активности СОД. Концентрация ТБК-АП в группе пациентов без ишемии миокарда составила 14,42 (10,06; 18,46) vs 14,04 (11,09; 17,76) мкмоль/л (p=0,79) у пациентов с ишемической кардиомиопатией. Активность СОД у пациентов без ИБС — 23,9 (15,5; 46,6) vs 20,8 (16,6; 36,1) Ед/мл, (р=0,42) у пациентов с ИБС.

Не удалось выявить значимых различий при сравнении рассматриваемых показателей в зависимости от отсутствия или наличия в анамнезе перенесённого инфаркта миокарда. Концентрация ТБК-АП в группе с инфарктом миокарда в анамнезе составила 14,1 (10,8; 18,2) vs 13,2 (10,3; 16,2) (р=0,37) мкмоль/л без инфаркта миокарда, активность СОД соответственно 21,9 (16,2; 40,8) vs 20,7 (16,4; 34,1) Ед/мл, (р=0,35).

Рассматриваемая выборка включала 35 пациентов с сочетанным течением ХСН и СД2 и 133 пациента с ожирением (таблица 1). Оказалось, что наличие СД2 характеризовалось значимо (р=0,009) более высокими показателями ТБК-АП, но не влияло на активность СОД (таблица 4). Наличие ожирения у пациентов также сопровождалось усиленной наработкой ТБК-АП, при одинаковой активности СОД в подгруппах пациентов. У пациентов с ХСН, имеющих концентрацию общего ХС >5,2 ммоль/л, также было отмечено повышенное содержание в плазме крови ТБК-АП (р=0,05) в сравнении с пациентами с уровнем ХС ≤5,2 ммоль/л. По активности СОД рассматриваемые подгруппы не различались.

Таблица 4

Показатели активности окислительного стресса в зависимости от метаболического состояния больных с ХСН и высоким риском развития ВСС, Me (Q25; Q75)

Показатель

СД2

 

Наличие (n=35)

Отсутствие (n=163)

р

ТБК-АП, мкмоль/л

16,12 (11,75; 22,46)

12,63 (10,32; 16,15)

0,009

СОД, Ед/мл

20,52 (16,97; 43,80)

21,45 (16,27; 40,50)

0,743

Ожирение

 

Наличие (n=133)

Отсутствие (n=65)

 

ТБК-АП, мкмоль/л

14,52 (11,57; 17,76)

12,11 (10,32; 16,22)

0,043

СОД, Ед/мл

22,84 (17,32; 45,30)

24,00 (17,14; 42,50)

0,800

Гиперхолестеринемия

 

ХС >5,2 мкмоль/л (n=34)

ХС ≤5,2 мкмоль/л (n=163)

 

ТБК-АП, мкмоль/л

15,61 (12,31; 20,48)

13,30 (10,35; 17,25)

0,05

СОД, Ед/мл

17,46 (14,52; 28,47)

21,66 (16,72; 40,50)

0,107

Примечание: ПОЛ — перекисное окисление липидов, СД2 — сахарный диабет 2 типа, СОД — супероксиддисмутаза, ТБК-АП — активные продукты ПОЛ, реагирующие с тиобарбитуровой кислотой, Me (Q25; Q75) — медиана (интерквартильный размах).

У включенных в исследование пациентов методом массового параллельного секвенирования были определены полиморфные варианты мтДНК А2706G, G3010A, G9055A. Кроме того, в результате секвенирования была определена принадлежность мтДНК пациентов к основным гаплогруппам мтДНК. Для анализа были выбраны наиболее часто встречающиеся гаплогруппы: H, U и T.

Сравнение концентраций ТБК-АП в группах носителей полиморфных вариантов А2706G, G3010A и G9055A показало значимо более низкое содержание конечных продуктов ОС у носителей полиморфизма G9055A относительно носителей полиморфизма А2706G (таблица 5). Различия концентраций ТБК-АП между носителями полиморфных вариантов G3010A и G9055A не было. Между подгруппами не было выявлено различий по активности СОД в плазме крови. Статистический анализ показателей ОС при распределении пациентов на группы по носительству распространенных гаплогрупп Н, U и T не показал значимого различия по концентрации ТБК-АП и активности СОД (таблица 5).

Таблица 5

Активность СОД и концентрация ТБК-АП у носителей полиморфных вариантов мтДНК, (Me (Q25; Q75))

Показатель

Полиморфные варианты мтДНК

 

А2706G (n=82)

G3010A (n=26)

G9055A (n=11)

р

ТБК-АП, мкмоль/л

12,89 (10,35; 16,99)

11,93 (9,84; 17,86)

9,55 (7,88; 12,24)

А2706G vs G3010A р=0,40

А2706G vs G9055A р=0,004

G3010A vs G9055A р=0,11

СОД, Ед/мл

22,94 (18,78; 43,00)

32,40 (17,32; 46,60)

21,70 (17,13; 34,00)

А2706G vs G3010A р=0,74

А2706G vs G9055A р=0,53

G3010A vs G9055A р=0,40

 

Гаплогруппы мтДНК

 

Н (n=66)

U (n=44)

T (n=20)

Р (тест Краскел-Уоллиса)

ТБК-АП, мкмоль/л

12,5 (10,2; 15,9)

13,9 (11,3; 19,2)

13,1 (10,6; 15,2)

0,14

СОД, Ед/мл

31,4 (17,5; 46,6)

27,6 (20,7; 43,8)

37,15 (19,58; 54,0)

0,83

Примечание: n — число пациентов, носителей рассматриваемого полиморфного варианта мтДНК или гаплогруппы; мтДНК — митохондриальная дезоксирибонуклеиновая кислота, ПОЛ — перекисное окисление липидов, СОД — супероксиддисмутаза, ТБК-АП — активные продукты ПОЛ, реагирующие с тиобарбитуровой кислотой, Me (Q25; Q75) — медиана (интерквартильный размах).

Обсуждение

Активация свободнорадикального окисления липидов, белков и нуклеиновых кислот (ОС) является ключевым звеном патогенеза многих ССЗ. Исследование маркеров ОС в плазме крови пациентов с ХСН и высоким риском ВСС показало значимо более высокое содержание ТБК-АП и активность антиокислительного фермента СОД в сравнении со здоровыми добровольцами. Полученные результаты свидетельствуют о высокой активности свободнорадикального окисления липидов у пациентов с коморбидным течением ХСН и желудочковых тахиаритмий. В ответ на ОС у пациентов с исследуемой патологией наблюдается компенсаторная активация СОД. Стоит отметить, что у пациентов с ХСН и высоким риском ВСС не было выявлено межполовых различий в интенсивности ОС и активности антиоксидантной защиты. Была отмечена лишь тенденция преобладания активности СОД у женщин в сравнении с мужчинами. В отличие от пациентов, в группе здоровых добровольцев для мужчин по сравнению с женщинами было характерно значимо более высокое накопление вторичных продуктов ПОЛ на фоне значимо меньшей активности СОД, что свидетельствует о снижении защиты от действия свободных радикалов на этапе образования АФК и инициации свободно-радикального повреждения. Вероятно, исходно повышенный уровень физиологического течения ОС у здоровых мужчин, наряду с другими факторами, вносит свой вклад в развитие ХСН и аритмии и объясняет преобладание мужчин в исследуемой выборке пациентов.

Сравнение исследуемых маркеров ОС у здоровых мужчин vs мужчин с ХСН и ИКД показало напряжение антиокислительной системы, выразившееся в значимом повышении на 33% активности СОД в плазме крови пациентов. Сравниваемые подгруппы не различались по концентрации ТБК-АП, что может быть объяснено высоким уровнем их образования уже у здоровых мужчин. Половые особенности женщин выразились в том, что коморбидное течение ХСН и желудочковых аритмий происходит на фоне значимого увеличения активности СОД в сравнении со здоровыми женщинами (на 53%; р=0,039). Концентрация в плазме ТБК-АП имела тенденцию к увеличению, что дает возможность предположить достижение различий при увеличении групп наблюдения, либо значимого различия в содержании других маркеров ОС.

Факт срабатывания ИКД не был связан с интенсивностью ОС, о чем свидетельствует отсутствие значимой разницы при сравнении маркеров ОС между группами со срабатыванием и без срабатывания. Вероятно, что отмеченный уровень ОС в наблюдаемой группе пациентов не оказывает негативного влияния на механизмы аритмогенеза миокарда желудочков. Следует учитывать и тот факт, что пациентам с ХСН не только устанавливают ИКД, но и в 100% случаев подбирают фармакологическую терапию, которая также может воздействовать на процессы ОС.

Утяжеление ФК ХСН также не характеризовалось увеличением концентрации ТБК-АП в плазме пациентов. Со стороны активности СОД нами была отмечена значимо низкая (р=0,011) активность СОД у пациентов с ХСН ФК II. При этом у пациентов с ФК III показатель активности СОД занимал промежуточное место между значениями в подгруппах пациентов с ФК I и ФК II.

Наличие у пациентов с ХСН и высоким риском развития ВСС метаболических нарушений таких как СД2, ожирение, гиперхолестеринемия характеризовалось более высокими показателями концентрации ТБК-АП, при отсутствии изменения активности СОД.

Колебания уровня глюкозы и дислипидемия запускают воспалительные реакции посредством повышения продукции митохондриального супероксида и стресса эндоплазматического ретикулума [12]. Отсутствие компенсаторной реакции антиоксидантов при рассматриваемых патологиях может быть обусловлено ингибированием части молекул фермента за счет гликозилирования [13][14], нарушением метаболических процессов и синтеза антиоксидантов в организме [15], их расходованием или ингибированием в результате взаимодействия ТБК-АП с активным центром СОД при ОС [16].

Митохондриальный геном находится в непосредственной близости к месту образования АФК и подвергается окислительному повреждению из-за отсутствия гистонов и недостаточной системы репарации [17][18]. Изменения в мтДНК могут отражаться на ферментативной активности белков переносчиков ЭТЦ МХ, что приводит к утечке электронов, усиленному образованию АФК и активации ОС в различных тканях у пациентов с ССЗ. Протекание свободно-радикальных реакций в липидах мембран МХ способствует дополнительной утечке электронов из ЭТЦ и усилению ПОЛ. В результате замыкается порочный круг, способствующий повышенной наработке АФК и повреждению мтДНК. Активное протекание ОС и мутации мтДНК могут отражаться на функциональной активности МХ. В ранее проведенных исследованиях у пациентов с ХСН и высоким риском ВСС нами был выявлен факт снижения функциональной активности МХ в сравнении с моновариантным течением ХСН [19]. Также было показано, что у носителей замены A2706G в структуре мтДНК ухудшается сопряжение окисления и фосфорилирования при флавинадениндинуклеотид-зависимом типе дыхания. Носительство замены G9055A мтДНК может способствовать ухудшению окисления никотинамидадениндинуклеотид-зависимых (НАД-зависимых) субстратов. Носительство замены G3010A в мтДНК не ассоциировано с изменениями функциональных возможностей МХ и клинической картиной у пациентов с ХСН и высоким риском развития жизнеугрожающих тахиаритмий [20]. Носительство замены A2706G или G9055A в мтДНК сочеталось со снижением скорости окисления флавинадениндинуклеотид-зависимых субстратов у мужчин с ХСН и высоким риском развития жизнеугрожающих тахиаритмий [20].

В литературе показана ассоциация носительства некоторых полиморфных вариантов мтДНК с интенсивностью ОС при старении [21][22]. Несмотря на это, отсутствуют сведения об ассоциации уровней маркеров ОС с распространенными вариантами и/или гаплогруппами мтДНК при ССЗ. Проведенное нами исследование позволило выявить наименьшую концентрацию ТБК-АП в плазме крови носителей полиморфного варианта G9055A мтДНК относительно носителей вариантов А2706G и G3010A. При этом различия активности СОД в группах носителей рассматриваемых полиморфных вариантов не наблюдалось.

Замена G9055A в гене MT-ATP6 белка субъединицы ATP6 из комплекса V согласно базе данных MitoMap присутствует у 4,2% населения мира и это значение увеличивается до 8,1% у 90-летних людей [23]. Замена аминокислоты аланина на треонин (A177T) подразумевает изменение гидрофобной аминокислоты на более крупную полярную незаряженную. Примечательно, что белковая спираль в ATP6 на 60% состоит из гидрофобных аминокислот, что, возможно, позволяет ей перемещаться внутри мембраны. Следовательно, мутация, ведущая к замене аминокислоты с гидрофобной на полярную (гидрофильную), может замедлить взаимодействие ATP6 с другими комплексами, снизить способность продуцировать аденозинтрифосфат и уменьшить выраженность ОС [24]. Кроме того, было показано, что мутация G9055A в гене MT-ATP6 мтДНК является единственным однонуклеотидным полиморфизмом, способствующим долголетию [25], что также может быть связано с уменьшением интенсивности ОС у носителей данного полиморфизма.

Ограничения исследования. К ограничениям проведенного исследования следует отнести одноцентовый характер исследования, преобладание в основной группе мужчин, а также небольшой размер группы контроля. У здоровых добровольцев не было выполнено определение носительства полиморфных вариантов и гаплогрупп.

Заключение

У пациентов с ХСН и высоким риском ВСС отмечается высокая концентрация ТБК-АП и активность СОД в плазме крови, что свидетельствует об интенсивном течении ОС. У здоровых добровольцев уровень ТБК-АП в плазме значимо выше у мужчин и сочетается со сниженной активностью СОД. При развитии ХСН межполовые различия отсутствуют. Течение ХСН с высоким риском ВСС на фоне метаболических нарушений обмена глюкозы и липидов, характеризуется белее интенсивным ОС. Носительство полиморфного варианта G9055A гена MT-ATP6 сопряжено с низким уровнем ТБК-АП.

Отношения и деятельность: все авторы заявляют об отсутствии потенциального конфликта интересов, требующего раскрытия в данной статье.

Список литературы

1. Палаткина Л. О., Корнеева О. Н., Драпкина О. М. Окислительный стресс — роль в патогенезе хронической сердечной недостаточности, возможности коррекции. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2012; 11(6):91-4. doi:10.15829/1728-8800-2012-6-91-94.

2. Adameova A, Shah AK, Dhalla NS. Role of Oxidative Stress in the Genesis of Ventricular Arrhythmias. Int J Mol Sci. 2020;21(12): 4200. doi:10.3390/ijms21124200.

3. Гусакова А. М., Суслова Т. Е., Арчаков Е. А. и др. Взаимосвязь маркеров окислительного стресса с клиническими результатами радиочастотной аблации у пациентов с фибрилляцией предсердий. Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины. 2025;40(3):76-84. doi:10.29001/2073-8552-2025-40-3-76-84.

4. Vermot A, Petit-Härtlein I, Smith SME, еt al. NADPH Oxidases (NOX): An Overview from Discovery. Molecular Mechanisms to Physiology and Pathology. Antioxidants (Basel). 2021;10(6):890. doi:10.3390/antiox10060890.

5. Yang KC, Bonini MG, Dudley SC Jr. Mitochondria and arrhythmias. Free Radic Biol Med. 2014;71:351-61. doi:10.1016/j.freeradbiomed.2014.03.033.

6. Lei M, Salvage SC, Jackson AP, еt al. Cardiac arrhythmogenesis: roles of ion channels and their functional modification. Front Physiol. 2024;15:1342761. doi:10.3389/fphys.2024.1342761.

7. Martínez-Redondo D, Marcuello A, Casajús JA, еt al. Human mitochondrial haplogroup H: the highest VO2max consumer–is it a paradox? Mitochondrion. 2010;10(2):102-7. doi:10.1016/j.mito.2009.11.005.

8. Weissensteiner H, Forer L, Kronenberg F, еt al. mtDNAServer 2: advancing mitochondrial DNA analysis through highly parallelized data processing and interactive analytics. Nucleic Acids Res. 2024;52(W1):W102-W107. doi:10.1093/nar/gkae296.

9. Andrews RM, Kubacka I, Chinnery PF, еt al. Reanalysis and revision of the Cambridge reference sequence for human mitochondrial DNA. Nat Genet. 1999;23(2):147. doi:10.1038/13779.

10. van Oven M, Kayser M. Updated comprehensive phylogenetic tree of global human mitochondrial DNA variation. Hum Mutat. 2008;30(2):E386-94. doi:10.1002/humu.20921.

11. Реброва Т. Ю., Шипулин В. М., Афанасьев С. А. и др. Опыт применения аскорбиновой кислоты как антиоксиданта у пациентов после операции коронарного шунтирования с использованием искусственного кровообращения. Кардиология. 2012;52(7):73-6.

12. Brownlee M. Biochemistry and molecular cell biology of diabetic complications. Nature. 2001;414:Р.813-20. doi:10.1038/414813a.

13. Khan MA, Anwar S, Aljarbou AN, еt al. Protective effect of thymoquinone on glucose or methylglyoxal-induced glycation of superoxide dismutase. Int J Biol Macromol. 2014;65:16-20. doi:10.1016/j.ijbiomac.2014.01.001.

14. Preetha Rani MR, Anupama N, Sreelekshmi M, еt al. Chlorogenic acid attenuates glucotoxicity in H9c2 cells via inhibition of glycation and PKC α upregulation and safeguarding innate antioxidant status. Biomed Pharmacother. 2018;100:467-77. doi:10.1016/j.biopha.2018.02.027.

15. Refat MS, Hamza RZ, Adam AMA, еt al. Quercetin/Zinc complex and stem cells: A new drug therapy to ameliorate glycometabolic control and pulmonary dysfunction in diabetes mellitus: Structural characterization and genetic studies. PLoS One. 2021;16(3): e0246265. doi:10.1371/journal.pone.0246265.

16. Arya A, Azarmehr N, Mansourian M, еt al. Inactivation of the superoxide dismutase by malondialdehyde in the nonalcoholic fatty liver disease: a combined molecular docking approach to clinical studies. Arch Physiol Biochem. 2021;127(6):557-64. doi:10.1080/13813455.2019.1659827.

17. Vinogradov AD, Grivennikova VG. Oxidation of NADH and ROS production by respiratory complex I. Biochim Biophys Acta. 2016;1857(7):863-71. doi:10.1016/j.bbabio.2015.11.004.

18. DeBalsi KL, Hoff KE, Copeland WC. Role of the mitochondrial DNA replication machinery in mitochondrial DNA mutagenesis, aging and age-related diseases. Ageing Res Rev. 2017;33:89-104. doi:10.1016/j.arr.2016.04.006.

19. Корепанов В. А., Реброва Т. Ю., Атабеков Т. А. и др. Возможная роль митохондриальной дисфункции в аритмогенезе при ишемической болезни сердца. Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины. 2023;38(4):236-42. doi:10.29001/2073-8552-2023-38-4-236-242.

20. Корепанов В. A., Атабеков Т. А., Голубенко М. В. и др. Генетические и функциональные особенности митохондрий лейкоцитов периферической крови пациентов при ишемической болезни сердца с высоким риском внезапной сердечной смерти. Бюллетень сибирской медицины. 2025;24(4):31-9. doi:10.20538/1682-0363-2025-4-31-39.

21. Wei YH, Wu SB, Ma YS, еt al. Respiratory function decline and DNA mutation in mitochondria, oxidative stress and altered gene expression during aging. Chang Gung Med J. 2009;32(2):113-32.

22. Kretzschmar C, Roolf C, Timmer K, еt al. Polymorphisms of the murine mitochondrial ND4, CYTB and COX3 genes impact hematopoiesis during aging. Oncotarget. 2016;7(46):74460-72. doi:10.18632/oncotarget.11952.

23. Ren WH, Li XH, Zhang HG, еt al. Mitochondrial DNA haplogroups in a Chinese Uygur population and their potential association with longevity. Clin Exp Pharmacol Physiol. 2008;35(12):1477-81. doi:10.1111/j.1440-1681.2008.05028.x.

24. Pires DEV, Rodrigues CHM, Albanaz ATS, еt al. Exploring Protein Supersecondary Structure Through Changes in Protein Folding, Stability, and Flexibility. Methods Mol Biol. 2019;1958:173-85. doi:10.1007/978-1-4939-9161-7_9.

25. Castañeda V, Haro-Vinueza A, Salinas I, еt al. The MitoAging Project: Single nucleotide polymorphisms (SNPs) in mitochondrial genes and their association to longevity. Mitochondrion. 2022;66:13-26. doi:10.1016/j.mito.2022.06.008.


Об авторах

Т. Ю. Реброва
Научно-исследовательский институт кардиологии, ФГБНУ Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук
Россия

Татьяна Юрьевна Реброва — к.м.н., н.с. лаборатории молекулярно-клеточной патологии и генодиагностики.

Ул. Киевская, д. 111а, Томск, 634012



В. А. Корепанов
Научно-исследовательский институт кардиологии, ФГБНУ Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук
Россия

Вячеслав Андреевич Корепанов — к.м.н., м.н.с. лаборатории молекулярноклеточной патологии и генодиагностики.

Ул. Киевская, д. 111а, Томск, 634012



М. В. Голубенко
Научно-исследовательский институт медицинской генетики, ФГБНУ Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук
Россия

к.б.н., с.н.с. лаборатории популяционной генетики.

Ул. Набережная реки Ушайки, д. 10, Томск, 634050



Э. Ф. Муслимова
Научно-исследовательский институт кардиологии, ФГБНУ Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук
Россия

к.м.н., н.с. лаборатории молекулярно-клеточных патологии и генодиагностики.

Ул. Киевская, д. 111а, Томск, 634012



Т. А. Атабеков
Научно-исследовательский институт кардиологии, ФГБНУ Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук
Россия

к.м.н., врач-сердечно-сосудистый хирург отделения хирургического лечения сложных нарушений ритма сердца и электрокардиостимуляции.

Ул. Киевская, д. 111а, Томск, 634012



С. В. Попов
Научно-исследовательский институт кардиологии, ФГБНУ Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук
Россия

д.м.н., профессор, академик РАН, директор.

Ул. Киевская, д. 111а, Томск, 634012



С. С. Доржиева
ФГБНУ "Медико-генетический научный центр им. акад. Н.П. Бочкова"
Россия

Ординатор.

Ул. Москворечье, д. 1, Москва, 115522



А. А. Утусикова
ФГБОУ ВО "Сибирский государственный медицинский университет" Минздрава России
Россия

Студентка 6 курса медико-биологического факультета.

Московский тракт, д. 2, Томск, 634050



С. А. Афанасьев
Научно-исследовательский институт кардиологии, ФГБНУ Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук
Россия

д.м.н., профессор, руководитель лаборатории молекулярно-клеточной патологии и генодиагностики.
Ул. Киевская, д. 111а, Томск, 634012



Что известно о предмете исследования?

  • Митохондрии (МХ) являются источником активных форм кислорода. При патологиях нарушения в дыхательной цепи МХ являются дополнительной причиной активации окислительного стресса.

Что добавляют результаты исследования?

  • У здоровых мужчин уровень образования продуктов перекисного окисления липидов (ПОЛ) выше, чем у женщин.
  • Повышение концентрации маркеров окислительного стресса при хронической сердечной недостаточности (ХСН) высокого риска внезапной сердечной смерти (ВСС) не зависит от пола пациента.
  • Течение ХСН с высоким риском ВСС на фоне сахарного диабета, ожирения и дислипидемии характеризуется белее интенсивным образованием продуктов ПОЛ на фоне сохраненной активности супероксиддисмутазы.
  • При ХСН с риском ВСС носительство полиморфной замены G9055A митохондриальной дезоксирибонуклеиновой кислоты характеризуется значимо низким уровнем активных продуктов ПОЛ, реагирующих с тиобарбитуровой кислотой (ТБК-АП) в сравнении с носителями замен А2706G.

Рецензия

Для цитирования:


Реброва Т.Ю., Корепанов В.А., Голубенко М.В., Муслимова Э.Ф., Атабеков Т.А., Попов С.В., Доржиева С.С., Утусикова А.А., Афанасьев С.А. Выраженность окислительного стресса и носительство полиморфных вариантов митохондриальной ДНК у пациентов с хронической сердечной недостаточностью, имеющих высокий риск внезапной сердечной смерти. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2026;25(7):4782. https://doi.org/10.15829/1728-8800-2026-4782. EDN: OXPQIF

For citation:


Rebrova T.Yu., Korepanov V.A., Golubenko M.V., Muslimova E.F., Atabekov T.A., Popov S.V., Dorzhieva S.S., Utusikova A.A., Afanasyev S.A. Oxidative stress severity and mitochondrial DNA polymorphisms in patients with heart failure at high risk of sudden cardiac death. Cardiovascular Therapy and Prevention. 2026;25(7):4782. (In Russ.) https://doi.org/10.15829/1728-8800-2026-4782. EDN: OXPQIF

Просмотров: 353

JATS XML


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1728-8800 (Print)
ISSN 2619-0125 (Online)